Jak ja w komentarzach czytam tych głypich dzieciaków to przestaje wierzyć w dzisiejsze pokolenie bezmózgowców. Karp czy inna ryba jak zabijesz dzieciaku to podczas krojenia potrafi ogonem machać bo nerwy działają jeszcze.. i to normalne. Albo już smażony na patelni sie ruszać może przez nerwy czy podskakiwać nawet. Doedukujcie sie dzieci bo widać że nigdy z was ryby nie robił i sie nie zana. Ja jak dzjeciaj byłem to juz sam potrafiłem sie zająć rybą na święta czy kure ubić i ogarnąć a nawet królika na pasztet. Ale jak sie mie uczycie a rodziców macie głupivh co was nie uczą to już wasz problem. Bo dzisiejsza głupia młodzież nic nie potrafi i jak przyjdzie co do czego i ciężkie czasy, to pierwsi zdechniecie bo sobie nie poradzicie w niczym.
@lanabanana90386 ай бұрын
Więcej takich zadań na olimpiadzie!
@albertkasztan6 ай бұрын
lubie parówki :D
@qlusia9 ай бұрын
Proszę nie dotykać płytki gołymi rękami. Będą ślady :)
@VlogMati10 ай бұрын
co to za mikroskop jest na planie filmu . tylko dokładnie bym prosił . pozdrawiam
@agoldek Жыл бұрын
Czy jako bielinkę można użyć roztwór chloru?
@FilipD-fx1kd Жыл бұрын
Dzień dobry, jaką opcję ukorzeniania drzewa wybrać, przy konstrukcji drzewa metodą maksymalnej parsymonii (midpoint/outgroup)? Czy ewentualnie da się zrobić tak, by drzewa (wszystkie możliwe wraz z obliczona długością) pozostały nieukorzenione?
@user-ej2mx4ge5o Жыл бұрын
Bardzo zrozumiale opracowane mam tylko pytanie czy klonowanie in sillico obowiązuje uczestników etapu centralnego olimpiady?
@marcin751 Жыл бұрын
Ale tu jest wszystko źle. Szukałem instrukcji dla laborantek pracujących w mojej firmie. 1) Nie trzymamy nigdy pipety na boku. 2) Nie dotykamy ścianki naczynia z którego pobieramy 3) Nie uderzamy tylko wciskamy końcówki. 4) Jak najbardziej puszczamy gwałtownie tłoczek ale musi być zanurzone w cieczy na tyle głęboko by nie pobrać powietrza. Daje to większą dokłądność.
@andziacece4713 Жыл бұрын
Dzięki że pokazałeś metodę barwienia preparatów ale szkoda że nie pokazałeś efektu pod mikroskopem. Krojenie łodygi mogłeś wyciąć po dwóch plasterkach.
@maciejwozniak57892 жыл бұрын
Czym najlepiej usypiać no np stawonogi
@w.59482 жыл бұрын
Łapanie skrawków w to metalowe narzędzie nie zniszczy struktury skrawka? Wszak minimalny nawet nacisk raczej rozwali jego strukturę. Nie ma lepszych opcji?
@hupal2 жыл бұрын
fajne 😍
@hedwigs39392 жыл бұрын
I co tam sa takie zajecia w laboratorium? :D
@dominika26192 жыл бұрын
W jaki sposób otrzymać sekwencję białkową z odwróconą lokalizacją metki histydynowej na początku ?
@alicja41202 жыл бұрын
Czy uspiony karaczan nie czuje bólu?
@jandobek9592 жыл бұрын
Dobry content kiedy sequel
@grappanice37012 жыл бұрын
Jezu jak was to brzydzi ludzie to nie oglądajcie kto wam karze?
@brum42 жыл бұрын
kiedy wbiłem jest 8999 wyśietleń lol
@nastka22072 жыл бұрын
Dziekuje!!
@d_a.w.i_d52272 жыл бұрын
Mam pytanie Wraz z większym powiększeniem obiektywu ostrość obrazu rośnie, czy maleje?
@oliwiad.94452 жыл бұрын
Maleje
@shion39482 жыл бұрын
Pomocne
@zabek66082 жыл бұрын
czesc
@NienaBurundi2 жыл бұрын
#jebaćpis
@nieistotna42922 жыл бұрын
#jebaćpis
@Chalkson Жыл бұрын
#jebaćpis
@Shadow_101.2 жыл бұрын
Pozdrawiam 1b
@koksu15002 жыл бұрын
elo here
@annakowalska77163 жыл бұрын
Świetnie opowiedziałeś o obsłudze tego typu pipet.Bardzo mi się przydal ten Twój filmik.Wielkie dzieki!!!
@szymonsak16523 жыл бұрын
Głupia baba tak męczyć zwierzątka karaluchy koty psy małpy a potem zdziwienie że jakieś epidemie ludzie sami się wykoncza,ci przeudonaukowcy powinni sami sobie tak robić na sobie takie eksperymenty co do niczego nie prowadzą
@pawegoral90283 жыл бұрын
Czy jeżeli wygram lub zostanę laureatem w olimpiadzie biologicznej to mam pewność ze dostanę się na studia - medycynę ? Jak to w ogóle jest ?
@krzysztofliterski64723 жыл бұрын
Jak zostaniesz finalistą lub laureatem to masz 100 procent z biologii na maturze, a część uczelni oferuje specjalne warunki, np. od razu gwarantuje indeks
@mirakmirakovski61883 жыл бұрын
Można wiedzieć jak permanentnie zrobić taki preparat? Widziałem że używana jest do tego jakaś specjalna substancja która po czasie twardnieje, jednak nie pamiętam jak się ona zwała i nie mogę jej nigdzie znaleźć.
@wiolettatarnowska28803 жыл бұрын
Witam jak mogłabym się z Panem skontaktować? Mam kilka pytań.
@ukaszbanasiak47873 жыл бұрын
Już się Pani skontaktowała - za pomocą komentarzy KZfaq. W czym mogę pomóc?
@wiolettatarnowska28803 жыл бұрын
@@ukaszbanasiak4787 Witam dziękuję,posiadam mikroskop Delta Optical BioStage ll Jak rozebrać obiektyw do środka dostał się jakiś paproch a nie mogę znaleźć żadnego filmiku na ten temat Jeśli mógłby Pan przesłać link do takiego filmiku i ogólnie z czyszczeniem mikroskopu będę ogromnie wdzięczna Pozdrawiam
@ukaszbanasiak47873 жыл бұрын
Zadanie 1.1. można było rozwiązać w R za pomocą czterech kilku linijek kodu: dta <- read.csv2("bioch-dane.csv") dta$rec.conc <- 1/dta$conc dta$rec.speed <- 1/dta$speed by(dta, dta$x, function(x) lm(rec.speed ~ rec.conc, data = x))
@ukaszbanasiak47873 жыл бұрын
Jako że wszystkie punkty leżą idealnie na prostej (odchylenia są rzędu dziesięciotysięcznych lub mniejsze), to wystarczyło przeprowadzić prostą przez dwa dowolnie wybrane punkty. Jak się to zauważy, to do rozwiązania wystarczy kartka papieru i ołówek.
@ukaszbanasiak47873 жыл бұрын
Nie miałem pojęcia, że w ogóle istnieją takie... fantomy. Fajny film!
@ukaszbanasiak47873 жыл бұрын
A ja bym chciał podziękować Takao za wielki wysiłek włożony w organizację Olimpiady w tak trudnych warunkach, z jakimi do tej pory nie przyszło nam się nigdy wcześniej zmierzyć.
@annloren92083 жыл бұрын
Przepraszam jeśli pytanie jest głupie ale czy to normalne, że w drzewie w programie PAUP4 są ucięte nazwy organizmów ( były one bardzo długie, bo to zadanie z 48OB) ? Wyświetla się tylko nazwa łacińska, a część polskiej jest właśnie ucięta a powiększanie okna nic nie daje. Jeśli wczytam to drzewo później w FigTree to wszystko się normalnie wyświetla.
@olimpiadabiologicznakgob16913 жыл бұрын
Konsola PAUP lubi uprościć formę graficzną drzewa. To jest tylko rysunek pomocniczy. Do przeglądania drzew faktycznie wygodnie używać jest FigTree.
@TheMinecraftStickPL3 жыл бұрын
Dlaczego nie zostało wytłumaczone zadanie B? Chciałbym poznać odpowiedź, dlaczego długości 900, 2250 i 3050pz po cięciu zrekombinowanego plazmidu enzymem AvaI są w wariancie odwróconym a nie w orientacji "pod promotorem"???
@adamwiderson66793 жыл бұрын
Dziękuję za bardzo wartościowy film. Czy są jakieś ścisłe reguły odnośnie wyboru odpowiedniej bazy danych? A jeśli nie to czy na zawodach Olimpiady Biologicznej samemu należy wywnioskować, która baza danych jest odpowiednia czy też zostanie podana odpowiednia informacja?
@takaoishikawa98053 жыл бұрын
Zazwyczaj informacji o sekwencjach nukleotydowych i aminokwasoswych szukamy w GenBank, więcej o białkach w UniProt, natomiast o strukturach makrocząsteczek biologicznych w Protein Data Bank (PDB). Oczywiście są inne bazy, ale na zawodach OB sugerujemy bazy danych i narzędzia, z których Uczestnicy powinni korzystać rozwiązując zadania.
@dariatrojanowska93333 жыл бұрын
Fantastyczny materiał, ale w trakcie oglądania nasunęło mi się jedno pytanie i chciałam się upewnić. Czy w przypadku gdy dodajemy His-tag na koniec N to nie pomijamy kodonu STOP przy tworzeniu startera?
@takaoishikawa98053 жыл бұрын
Dziękujemy za dobre słowo! Oczywiście nie może być kodonu stop między fragmentem kodującym znacznik a częścią kodującą właściwe białko, bo jego obecność przerwałaby translację i nie powstałoby białko ze znacznikiem. Jednak po stronie 3' taki kodon stop może być przydatny, ponieważ część wektorów ma sekwencję kodującą znacznik (np. His-tag) zarówno po stronie 5', jak i 3' w stosunku do wprowadzanej sekwencji kodującej białko. Dobierając odpowiednie miejsca restrykcyjne i dbając o obecność lub brak kodonu stop po stronie 3' można mieć His-tag po właściwej stronie docelowego białka.
@CristianoRonaldo-de1uj3 жыл бұрын
RIP Książę Filip
@olimpiadabiologicznakgob16913 жыл бұрын
No tak, faktycznie książę Filip znalazł się w rodowodzie do omawianej wiązki zadań.
@strangethingswalking8823 жыл бұрын
Rozumiem, że należy wybrać jeden z enzymów tak, aby ostatecznie możliwe było "dodanie" sekwencji His-tag na końcu N lub C danego białka (w zależności od zadania) ale co z drugim enzymem? Czy podczas jego wyboru bierzemy pod uwagę tylko to, czy oba enzymy będą wydajnie działać w tym samym buforze, czy ważne jest także położenie enzymu w obrębie tzw. polilinkera - to znaczy, czy regułą jest to, żeby jeden enzym wybrać na jednym "końcu" polilinkera a drugi na przeciwnym tak, żeby sekwencją kodującą białko zastąpić jak największy fragment wektora? (W zadaniu z etapu centralnego 48 OB także należało na końcu 3' wybrać miejsce restrykcyjne leżące najbliżej terminatora).
@annloren92083 жыл бұрын
Podepne się. W przykładowym zadaniu o kalmodulinie z informatora OB mieliśmy stworzyć m.in. konstrukt który będzie miał znacznik His Tag na końcu N. Zrozumiałam to tak że mieliśmy stworzyć konstrukt który będzie miał znacznik tylko na tym końcu, a nie na końcu C. Jednak wybrano enzym "prawy" Xho1 zamiast tego który znajdował się przy terminatorze (Bpu1102) przez co ten znacznik, jeśli dobrze zrozumiem, pojawi sie również na końcu C, ponieważ nie zostanie wycięty przez enzym. Dlaczego w takim razie nie wybraliśmy enzymu Bpu1102 ? W jaki sposób możemy pozbyć się tego znacznika his tag na końcu C jeśli użyjemy enzymu Xho1?
@takaoishikawa98053 жыл бұрын
@Strange things walking Jeśli się da zrobić, tak jak napisano w komentarzu powyżej - zdecydowanie tak. Najlepiej, żeby rekombinowane białko pozbawione było różnych, niepotrzebnych ogonów polipeptydowych. Przy odrobinie nieszczęścia może być tak, że taki ogonek będzie przeszkadzać w pełnieniu funkcji biologicznych. Ale często ogonki kilku aminokwasowe się toleruje, bo w praktyce nie bardzo zmieniają właściwości wyrażanego białka. Na przykład w sekwencjach białek, których struktury są deponowane w PDF nierzadko można zauważyć obecność HHHHHH, co wskazuje na to, że prawdopodobnie zostało oczyszczone za pomocą chromatografii powinowactwa na złożu niklowym. W doborze enzymów restrykcyjnych podczas klonowania bardzo ważne jest to, żeby dobrze one współpracowały w jenym buforze, ale też (i przede wszystkim), żeby po połączeniu z wektorem po odpowiedniej stronie był promotor i terminator. Jeśli "wklei" nam się sekwencja kodująca białko "odwrotnie", pożądanego białka na pewno nie otrzymamy.
@takaoishikawa98053 жыл бұрын
@@annloren9208 Problem znacznika na końcu C można bardzo łatwo rozwiązać wstawiając kodon stop za ostatnim kodonem, który chcielibyśmy mieć w sekwencji kodującej a sekwencją rozpoznawaną przez enzym restrykcyjny. Tak więc niezależnie od wybranego enzymu "z prawej strony", jeśli dodamy na "overhangu" kodon stop, znacznika na końcu C nie będzie, mimo obecności sekwencji kodującej go za miejscem restrykcyjnym.
@annloren92083 жыл бұрын
@@takaoishikawa9805 bardzo dziękuję za odpowiedź 😁😁
@maksymilianebek50883 жыл бұрын
Czy określając pokrewieństwo taksonów, np. generując metodą UPGMA drzewo w PAUP4 na podstawie przyrównania sekwencji genów konserwatywnych, np. genu kodującego histon H1.0 lub tym podobne, w opcjach w zakładce "missing/ambiguous" wskazane jest pozostawienie jako zaznaczonej opcji "distribute proportionally to unambiguous changes"?
@olimpiadabiologicznakgob16913 жыл бұрын
To jest trudne pytanie, a dobra odpowiedź brzmi "to zależy". Opcją zawsze bezpieczną jest wybrać "Ingnore sites for affected pairwise comparisons", co po prostu usuwa z przyrównania wszelkie kolumny z brakującymi danymi. Druga opcja "Distribute proportionally to unambiguous changes" ma sens w przypadkach, kiedy danych brakuje niewiele, tzn. nie chcemy tracić informacji zawartych w całej kolumnie, jeżeli tylko kilka taksonów ma tam wstawioną przerwę. Wtedy algorytm dokonuje pewnego uśrednienia. Załóżmy, że 80% sekwencji ma A, a 20% T w danej pozycji przyrównania. Odległość każdej z nich do nowej sekwencji z brakującą pozycją (przerwą) jest obliczana na zasadzie średniej ważonej, tzn. tak jakby w tym miejscu na 80% było A, a na 20% T. To oczywiście zaburza obliczoną odległość do tej sekwencji (to tylko uśredniony szacunek), ale ratuje informację zawartą w całej kolumnie przyrównania.
@maksymilianebek50883 жыл бұрын
Bardzo dziękuję za informacje.
@AhsokaMorph3 жыл бұрын
A jak można zapobiec przecięciu otwartej ramki odczytu przez 1 z wybranych enzymów restrykcyjnych w przypadku, gdy rozpoznawana przez niego sekwencja znajduje się wewnątrz ramki odczytu? Przecież nie można po prostu usunąć 1 czy 2 kodonów, ponieważ prawie na pewno nie powstałoby funkcjonalne białko.
@takaoishikawa98053 жыл бұрын
Bardzo dobre pytanie. Najlepiej sprawdzić wcześniej, czy enzym, który mamy na oku, czasem nie przecina właśnie otwartej ramki odczytu. Jeśli tak się dzieje - warto rozważyć użycie innego enzymu restrykcyjnego. Zazwyczaj wektory mają tzw. polilinker (ang. multiple cloning site), czyli obszar, w którym zgromadzono (specjalnie) wiele unikatowych miejsc restrykcyjnych. Jeśli jeden enzym nie pasuje z wyżej wymienionych powodów, zazwyczaj daje się wybrać inny. Jeśli wciąż jest problem, można rozważyć użycie pierwotnie wybranego enzymu, ale po uprzedniej mutagenezie sekwencji kodującej. Można wprowadzić mutację punktową, która zlikwiduje miejsce restrykcyjne, ale nie zmieni kodowanego w tym obszarze aminokwasu. Można też rozważyć tzw. niedotrawki, czyli potraktować enzymem restrykcyjnym z pełną świadomością tego, że może on przeciąć sekwencję kodującą, ale przez stosunkowo krótki czas. Można wówczas na żelu rozdzielić w pełni strawione fragmenty (przecięta sekwencja kodująca) oraz - przy sporym szczęściu - oraz niedotarawiony fragment, w którym, być może, koniec jest przecięty wybranym enzymem, ale "środek" - nie. Ale to jest absolutna ostateczność. W dzisiejszych czasach można także wykorzystać inne metody klonowania, w których w ogóle się nie używa enzymów restrykcyjnych - np. Gibson assembly albo Overlap-extention PCR. Ale chyba trochę odbiegam od tematu, więc jeśli chciałby Pan o tym więcej, bardzo proszę o pozostawienie komentarza. Pozdrawiam serdecznie Takao Ishikawa
@TheMinecraftStickPL3 жыл бұрын
A w którym miejscu można dowiedzieć się o właściwościach białka? Np. w jaki sposób zostało oczyszczone itp
@takaoishikawa42733 жыл бұрын
Bardzo często, choć nie zawsze, struktury białek są częścią publikacji. Zazwyczaj szczegółowych metod oczyszczania danego białka można spodziewać się właśnie w publikacji, która jest podana w głównej zakładce w polu „Literature”. Szczegóły dotyczące rozwiązania struktury są natomiast w zakładce „Experiment”.
@TheMinecraftStickPL3 жыл бұрын
Fajny filmik! Nasuwa mi się kilka pytań. Co się robi ze zbędną metioniną i alaniną? Przecież bakteria, która będzie dla nas wytwarzać amylazę nie wie, że te aminokwasy są zbędne, a często białko, które zawiera dodatkowe aminokwasy nie będzie pełnić pożądanej funkcji... I jeszcze jedno pytanie. W którym miejscu przesunęliśmy ramkę odczytu tak, że zamiast ciągu prolin powstały nam rzeczywiście histydyny? Od czego zależy którą wersję wektora - a, b czy c- użyjemy?
@annloren92083 жыл бұрын
Również chciałabym poznać odpowiedź na te pytania
@takaoishikawa98053 жыл бұрын
Dziękuję! Na ogół obecność kilku aminokwasów nie przeszkadza w pełnieniu funkcji biologicznych przez dane białko. Wątek ten pojawia się w odpowiedziach na inne komentarze, więc zapraszam do zapoznania się z nimi. Oczywiście, co innego, jeśli to jakieś spore fragmenty, które też mogą fałdować w struktury wyższego rzędu, ale póki jest to oligopeptydzik na jednym czy drugim końcu - nie ma to większego (najczęściej, choć nie zawsze) znaczenia. Inaczej takiej kariery nie zrobiłby His-tag, FLAG czy znacznik c-Myc. Jak to w biologii - są wyjątki, ale najczęściej nie są one problemem. Jeśli chodzi o ramkę odczytu i wersję wektora: ja mam u siebie akurat wersję pET28a (mam też w zamrażarce pozostałe, ale wersję "a" mam "na wierzchu", więc z niej najczęściej korzystam). Te wersje po prostu ułatwiają pracę, bo kwestię ramki odczytu można łatwo rozwiązać dobierając odpowiednią wersję do klonowanego fragmentu. Ale obecnie problem ten można rozwiązać po prostu na "overhangu" wstawiając 0, 1 albo 2 dodatkowe nukleotydy między sekwencją kodującą np. His-tag na końcu N (jeszcze na wektorze) a sekwencją kodującą, która jest produktem PCR, i którą chcemy wkleić do tego wektora. Jeśli z analizy sekwencji wyjdzie, że po użyciu danego enzymu restrykcyjnego, będzie spójna ramka odczytu dla obu fragmentów (His-tag i gen) - niczego nie dodajemy. Jeśli wyjdzie nam, że ramki odczytu się "rozjeżdżają", dodajemy 1 albo 2 nukleotydy w starterze do PCR, żeby ramkę dopasować.
@igorpaweleckr3 жыл бұрын
Dzięki, Panie Doktorze! Akurat robię izolację DNA do inżynierki metodami SDS, CTAB i QIAGEN i bardzo mi się przydały takie podstawy pipetowania! Z naukowym pozdrowieniem!
@takaoishikawa98053 жыл бұрын
Dziękuję Panu i cieszę się, że materiał się przydał. Z naukowym pozdrowieniem!
@jakubrychlik56133 жыл бұрын
Program ClustalX jest niezgodny z 64 bitowymi wersjami systemu MacOs (od Catalina do najnowszego Big Sur). Czym można ten program zastąpić?
@takaoishikawa42733 жыл бұрын
Można zastąpić programem ClustalO (www.clustal.org/omega/). Jeśli jest konieczny interfejs graficzny (GUI), można użyć programu AliView (ormbunkar.se/aliview/). Rozwiązanie sprawdziłem na macOS Big Sur.
@jakubrychlik56133 жыл бұрын
@@takaoishikawa4273 Dziękuję serdecznie za pomoc, znalazłem już alternatywne rozwiązanie w postaci korzystania z maszyny wirtualnej z odpalonym na niej windowsem 10, bo podobne problemy wystąpiły też z paupem i figtree, więc jeśli ktoś miałby analogiczny problem to polecam ten sposób :)
@lordzik88563 жыл бұрын
Był nie żywy tylko odruchy pośmiertne
@michastanowski10933 жыл бұрын
Dzień dobry, dziękuję za świetny materiał. Czy mogliby Państwo polecić program, który umożliwia przeprowadzenie transkrypcję i odwrotną transkrypcję in silico na system operacyjny MacOS? W ApE nie znajduje takiej funkcji. Pozdrawiam.
@takaoishikawa42733 жыл бұрын
Dzień dobry, dziękuję za ciepłe słowa. Sporo narzędzi można znaleźć na serwerach takich jak: www.expasy.org Oczywistą zaletą jest to, że można korzystać z nich niezależnie od systemu operacyjnego komputera. Nawiązując natomiast do Pana pytania, problem z transkrypcją i odwrotną transkrypcją jest taki, że w zasadzie sprawa - pod względem bioinformatycznym - sprowadza się do zamiany, odpowiednio, T na U albo U na T. Robi to np.: biomodel.uah.es/en/lab/cybertory/analysis/trans.htm Proszę jednak pamiętać, że nawet w bazach danych nierzadko do zapisywania sekwencji nukleotydowych RNA wykorzystuje się oznaczenia zasad azotowych typowych dla DNA. Trzeba więc być czujnym, ale i odpowiednio elastycznym. Gdyby Pan chciał poćwiczyć R, można ten problem rozwiązać dosłownie kilkoma linijkami kodu: # Przygotowanie sekwencji DNA do sprawdzenia skryptu dna <- "AATTGGCC" # Wyświetlenie sekwencji DNA print(dna) # Transkrypcja rna <- gsub("T", "U", dna) # Wyświetlenie sekwencji RNA print(rna) # Odwrotna transkrypcja rt <- gsub("U", "T", rna) # Wyświetlenie sekwencji DNA po odwrotnej transkrypcji print(rt)
@TheMinecraftStickPL3 жыл бұрын
Jako uczestnik OB muszę przyznać, że te zadania były choć trudne, to bardzo ciekawe. Dodatkowo bardzo podoba mi się formuła tłumaczenia zadań z olimpiady przez Pana Takao. Czy można prosić o więcej takich produkcji? Może coś, co mogłoby pomóc przygotować się do etapu centralnego? Pozdrawiam!
@tomaszk62973 жыл бұрын
bardzo ciekawe zadania :) PS 17:55 zadanie 43, nie 44 ;)
@jakubrychlik56133 жыл бұрын
Na mac os catalina 10.15.7 systemowe narzędzie archiwizujące nie rozpoznaje hasła. Jeśli ktoś ma taki problem to polecam zainstalować darmowego the unarchiver albo pokrewny program z app store i wszystko powinno być okej.